国内多菌灵的研究进展

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zoޛ)j馟iK6v	۲9׾]ם7ntiEj!> ,𚭷u)†)Vax!&Cx1 wj_(bhfRxz对照组相比,低质量浓度(0.75 g/L)的多菌灵对GSHPX活性起抑制作用;随着质量浓度的增加,多菌灵对其起诱导促进作用,在质量浓度为1.00~1.25 g/L时,多菌灵的诱导作用较强,酶活性迅速上升,并于125 g/L时达到峰值;多菌灵质量浓度继续增加,其诱导作用降低,酶活性开始下降,但仍高于对照组。

(2)多菌灵对蚯蚓过氧化物酶(POD)活性的影响。与对照组相比,0.75~1.00 g/L的多菌灵处理蚯蚓48 h,POD活性被抑制;但随着质量浓度的增加,酶活性明显上升,并于125 g/L时出现峰值,说明该质量浓度的多菌灵诱导促进了蚯蚓体内POD活性的升高;当多菌灵质量浓度达到1.50 g/L时,POD活性被抑制,且随着多菌灵质量浓度的升高,酶活性继续降低。

(3)多菌灵对蚯蚓超氧化物歧化酶(SOD)活性的影响。用质量浓度为0.72~1.25 g/L的多菌灵处理蚯蚓48 h,SOD活性均高于对照组,说明多菌灵对SOD活性起诱导促进作用,但高质量浓度多菌灵对SOD活性的促进诱导程度低于低质量浓度的多菌灵。

通过比较不同浓度的多菌灵对上述3种不同酶活性的影响,可以得出:多菌灵对蚯蚓体内的3种抗氧化酶存在不同程度的影响。从酶活性的变化趋势来看,对多菌灵的反应敏感顺序为:SOD>GSHPX>POD。

2.3.2 对大鼠睾丸发育和生精功能的影响。

为了探讨多菌灵对雄性大鼠睾丸发育和生精功能的影响及其作用机制,科研人员使用 40只清洁级未成年Wistar雄性大鼠进行试验,结果表明,中、高剂量组大鼠睾丸和附睾均明显萎缩、右侧睾丸和附睾重量减轻,左侧附睾尾精子活率和精子数量均低于对照组(P<0.01):中、高剂量组睾丸组织病理学检查可见明显异常;随着多菌灵染毒浓度的增加,各剂量组生精细胞凋亡率逐渐升高,cl2表达下降,Bax表达升高,与对照组比较差异有统计学意义(P<0.05,P<0.01)。由此得出[22],多菌灵可影响雄性大鼠的睾丸发育和生精功能[22],可能与下调Bcl2和上调Bax致细胞凋亡增加有关[23]

2.4 致癌性

经国内外学者的研究表明多菌灵无致癌作用。通过对老鼠的研究显示,有三分之二的研究表明多菌灵有增加肿瘤的副作用,但是植物科学委员会的研究表明多菌灵没有改变DNA的效果,得出的结论是:这些老鼠肝脏肿瘤不能解释为预测致癌危害人类[24-25]

3 多菌灵的降解

3.1 光解

虽然多菌灵的化学性质稳定,但是在自然界中由于光的存在进行着光解。经研究表明在太阳光照射下,多菌灵在正己烷、甲醇、重蒸水、池塘水和河塘水中的光稳定性特别强,表明其在自然条件下难以直接光解。但在光敏剂丙酮中却可以光解,光解的半衰期为33.8 d。其在高压汞灯下,在3种有机溶剂中的光解速率为:在正己烷溶液中最快,甲醇溶液中次之,丙酮溶液中最低;在不同水质中的光解速率为:重蒸水最快,河水次之,池塘水最慢;在不同pH的缓冲液光解速率为:pH4>pH9>pH7[5]。由此说明,光源的发射光谱和反应物质以及反应体系吸收光谱的重叠与吻合以及反应介质对光的吸收干扰是制约光解反应发生的重要因子[5]

3.2 多菌灵降解细菌进行降解

经研究发现了能够对多菌灵进行降解的细菌。在我国湖南省红土壤中已分离出多菌灵的降解菌,以多菌灵作为唯一碳源和能源生长的菌株1_1鉴定为Bproteobacteria中的Ralstonia sp(罗尔斯通氏菌),但目前该菌株尚不能定种,还需要与模式种进行DNA杂交,根据同源性作进一步分析,为多菌灵的生物降解提供了新的微生物资源。

西北农林大学对复合菌(多菌灵降解菌 Alcaligenes sp.和Rhodococcus sp.按1∶4配比)降解多菌灵的速率进行了研究,结果表明该复合菌群的最优降解条件为温度30 ℃、pH 6.0、接种量7%,该条件下多菌灵的降解率可达75.76%,添加少量氮源(如尿素和酵母浸粉)可促进复合菌对多菌灵的生物降解[26]

3.3 影响多菌灵降解的因素

多菌灵的降解受到多种因素的影响,主要包括土壤中微生物的种类、土壤中的含水量以及Cd的浓度。研究表明,土壤微生物、土壤湿度和土壤中Cd浓度、重复使用等对多菌灵的降解均有不同程度的影响,在所有处理中,灭菌土壤和未灭菌土壤比较,多菌灵的降解半衰期变化是最大的,所以土壤微生物是影响多菌灵降解的最主要因素,在多菌灵的降解中占有首要地位。试验选用的多菌灵降解菌-复合功能菌群也能有效降解土壤中多菌灵,对多菌灵的降解也有显著的促进作用。对土壤微生物生长、繁殖以及代谢活性有影响的环境因子也是影响多菌灵降解的重要因素之一, 如较高的土壤湿度和低浓度的Cd对土壤微生物生长有促进作用并能增强其活性,从而促进了土壤中多菌灵的降解,反之则抑制。重复施药会增加土壤微生物的抗性的降解[27]

4 多菌灵的研究现状以及展望

世界各国或各组织对多菌灵含量的最低要求不同,例如:欧盟的标准是200 μg/L,澳大利亚的标准则是不超过10 μg/L,美国的标准是不超过80 μg/L,我国标准低于欧美检测但未出台具体的规定,卫生部和农业部于2011年1月2日联合发布了《食品中多菌灵最大残留限量标准》,并已于当年4月1日实施。柑橘最大残留量不超过5.00 mg/kg,西瓜的最大残留量不超过050 mg/kg,韭菜的最大残留量不超过200 mg/kg。把柑橘的残留量标准换算成国际单位后是5 000 μg/L,远低于欧美的限量标准。笔者认为,我国应提升多菌灵的检测标准,因为在我国鉴定的合格农产品出口到国外时就会被鉴定为不合格的或是违反他们法律法规的违规产品,阻碍我国的农产品贸易。

已有的研究只是停留在残留量测定的层面,应该更深层次地研究多菌灵在动植物体内的代谢过程和最终代谢产物、最终代谢产物是否会产生二次污染、如何减少和分解其在农产品中的残留、长期使用是否会是病菌或其他微生物产生抗性、在动植物体内残留对它们的细胞或整体的影响机制等。

43卷3期                       魏中华等 国内多菌灵的研究进展

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