棉花多肽的分离提取方法建立及质谱鉴定

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ez-'!h+jh%k]材料的特殊性,相较于动物,植物多肽组学的发展仍较为缓慢。在本研究中,笔者参考动物多肽组的纯化过程[10-11]和植物蛋白质组的提取方法[12-13],对棉花根部的多肽提取方法进行探索和建立,利用高分辨级色谱质谱联用仪,对所提取的多肽进行NanoLC-MS/MS(纳升级液相色谱串联质谱)分析,利用已发表的棉花蛋白数据库进行搜索比对,并手动验证质谱的分析结果。本研究将为系统研究棉花多肽组的生物学信息和挖掘具有重要应用价值的新多肽提供新的方法和思路。

1 材料与方法

1.1 试验材料

供试棉花材料为亚洲棉中棉红茎,由江苏省农业科学院种质资源与生物技术研究所张保龙研究员提供。

1.2 试验时间和地点

本试验于2018年3月至2019年4月进行,试验在江苏省农业科学院种质资源与生物技术研究所江苏省重点实验室及南京农业大学生命科学学院完成。

1.3 试验方法

1.3.1 棉花根部多肽的分离提取 将亚洲棉中棉红茎的种子用清水冲洗后,播种于盆钵中,待幼苗长至2叶1心时,采集植物的根部组织进行多肽提取。用液氮研磨叶片至粉末状后,加入3倍体积的多肽提取液[含有7 mol/L尿素,2 mol/L硫代尿素,20 mmol/L DTT(二硫苏糖醇),5 μL Cocktail蛋白酶抑制剂],振荡提取15 min后,离心(4 ℃,12 000×g,10 min),取上清。上清液通过Microcon YM-10超滤管(Millipore,USA)除去分子量大于10 ku的大分子蛋白。在过滤后的上清中加入3倍体积的预冷丙酮,于-20 ℃放置4 h。离心取沉淀(4 ℃,12 000×g,10 min),沉淀再用1倍体积的预冷丙酮洗1次,离心(4 ℃,12 000×g,5 min),弃上清,将沉淀倒置晾干。将沉淀加入70%乙腈[含0.1%TFA(三氟乙酸)]中,振荡提取15 min,离心取上清(4 ℃,12 000×g,5 min)。用Millipore Ziptips(Merck KGaA,Darmstadt,Germany)对上清液进行脱盐处理,最终收集后抽真空干燥。将处理后的样品用0.1%甲酸复溶,离心(4 ℃,12 000×g,2 min),取上清液进行Nano LC-MS/MS分析。

1.3.2 Nano LC-MS/MS分析分离鉴定 将多肽样品于Nano-RSLC液相系统(Thermo Fisher Scientific,CA,USA)中进行60 min的梯度洗脱,流速为300 nL/min,进样量为 10 μL。采用纳升电喷雾离子源,电离模式:电喷雾ESI(+),喷雾电压为2.2 kV,毛细管温度为200 ℃。一级质谱在Orbitrap中扫描,扫描范围是350~1 800 m/z,分辨率为 60 000。所得信息用PEAKS软件进行De Novo(从头)测序,并用测得的序列搜寻棉花蛋白数据库,以得到最合适的鉴定结果。

2 结果与分析

2.1 棉花根部多肽的提取效果

植物内源多肽的丰度通常都非常低,并且植物细胞外的细胞壁中及细胞内含有大量色素,加上存在的次级代谢物等为多肽的获得和分离带来了极大困难。本研究由于后续应用高分辨率的色质联用仪,因此在提取方法上排除了与色谱不相容的十二烷基硫酸钠(SDS)法,笔者采用对分子量极小的蛋白分辨效果好的改良尿素法进行棉花多肽的提取。为了避免蛋白质和多肽的降解,本试验在样品采集和提取过程中始终保持在低温(4 ℃)下进行,并且在提取液中加入蛋白酶抑制剂。质谱分析后用PEAKS studio软件进行数據处理,将从头测序、数据库搜索2种方法结合进行多肽的鉴定。笔者从棉花根部组织共获得809个小分子肽序列,详见表1。这一结果表明,采用的改良尿素法对棉花多肽的分离效果较好。这些多肽的长度均较小,最大不超过70个氨基酸,以长度为10~20个氨基酸的多肽最多,其次为20~30个氨基酸长度的多肽。

2.2 棉花根部多肽的功能分类

由图1可见,通过比对棉花蛋白数据库,发现737个多肽可以匹配到已知蛋白上。通过对这些已知蛋白进行GO注释,笔者发现这些多肽来源的基因在结合和催化活性、细胞过程、代谢过程功能亚类中所占的比例最高(图1)。从未来生产应用角度,本研究还发现了与抗病防卫相关的蛋白包括病程相关蛋白10(PR10)、包含NB-ARC结构域的蛋白、过氧化氢酶、氧化还原酶等来源的多肽。例如,本研究发现病程相关蛋白10来源多肽的多个多肽,这些多肽除了序列较短,还伴有甲酰化、脱酰胺基化、乙基化等10种以上的氨基酸修饰方式,详见图2。

2.3 棉花根部多肽的定位

笔者将多肽的来源基因进行亚细胞定位预测。图3的预测结果显示,根部多肽来源的基因大多分布在细胞质中(52%),其次分别分布在细胞核(23%)、质体(20%)中,此外,还有少量多肽分布于细胞质膜、内质网膜上、过氧化物酶上等。

3 讨论与结论

在动物细胞及动物组织中,多肽和多肽组的提取方法较为成熟,然而在植物中,由于植物细胞结构的特殊性,目前植物多肽组的提取仍然是多肽组学研究中的关键步骤。在蛋白质组的提取过程中,常使用的去垢剂如SDS、Trixton等可以快速高效地提取样本的蛋白质,然而由于这些去垢剂与色谱不相容,因此本研究采用了对分子量极小的蛋白分辨效果好的改良尿素法对棉花多肽进行提取。孙婷婷等利用尿素法,基于Nano LC-MS/MS在水稻叶片和根部共鉴别出约110个多肽,通过功能分析发现,这些多肽参与了水稻重要的生理活动[13]。在本研究中,笔者在提取液中加入了蛋白酶抑制剂,首先减少了内源降解的干扰,其次使得提取过程保持在低温环境下进行,另外,提取过程中的无机盐提取剂在最后的除盐步骤中被去除,极大地提高了植物多肽组的提取纯度和效率。通过高分辨率的质谱检测和数据整理,笔者发现这种方法的提取效果较好,在棉花根部组织中鉴定出809个多肽。

通过对这些多肽的前体蛋白功能进行功能注释后发现,它们参与到细胞组成、 分子调控和生物代谢各个方面。例如笔者发现,病程相关蛋白来源的多肽可以调控植物的胁迫反应。病程相关蛋白是植物在受到生物、非生物胁迫后产生的一种小分子蛋白,具有广泛的功能,可以硬化细胞壁、传导信号以及抗菌等[14]。前人研究发现,病程相关蛋白10在参与植物的生长发育、次生代谢及应对外界生物和非生物胁迫时发挥着重要的作用[15]。在对棉花的研究中发现,黄萎病病菌侵染可以诱导PR10蛋白的表达[16-17]。转化烟草、拟南芥的试验结果表明,PR10可以提高植株对黄萎病病菌的抗性,并且能提高植物抗菌素黄酮类化合物的水平。此外,PR10的表达也能改变烟草、拟南芥的表型,如转基因植株生长延缓、转基因拟南芥叶片倾向于横向生长而呈近圆形、顶端优势减弱、侧生茎数量显著增多等现象,证实PR10也参与调控植物的生长发育[18]。尽管PR10的部分重要功能已被鉴定,然而其调控机制到目前为止还不清晰。在本研究中,笔者通过质谱分析发现,PR10可以产生多个不同修饰的多肽分子,因此推测PR10可能通过不同的多肽去调控不同的生长并应对环境胁迫反应。在后续研究中,笔者将聚焦这些重要多肽进行功能验证。

植物天然多肽组的提取是植物多肽组学发展的一切基础。通过探索高效的多肽分离方法,可以挖掘植物体中的天然活性多肽,后续将其作为生长调节剂或者抗菌药剂人工合成应用于生产,对于棉花增产抗病具有重要的理论与实践意义。

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